ANALYSIS OF THE ABILITY OF BACTERIAL SYMBIONTS OF BLACK TRUFFLE FUNGI TO REGULATE PLANT GROWTH

Research article
DOI:
https://doi.org/10.60797/JAE.2025.59.10
Issue: № 7 (59), 2025
Suggested:
18.04.2025
Accepted:
10.07.2025
Published:
18.07.2025
23
2
XML
PDF

Abstract

Truffles are cup fungi that form fruiting bodies in association with plant roots and soil microorganisms, the role of which has not been fully explored. It is known that many of these microorganisms are able to modify phytohormone levels, increase nutrient availability and suppress pathogens, which may have positive effects on plant growth and resistance. Thus, the aim of this study was to initially evaluate the diversity of bacteria associated with black truffle Tuber macrosporum and their ability to regulate Sinapis alba seed growth. Four genera of truffle symbiont bacteria, Paenibacillus sp., Peribacillus sp., Plantibacter sp. and Microbacterium sp. were selected for the study and cultured on different nutrient media. The extracts of these bacteria were assessed for their effect on white mustard seed growth. The results showed that the tested extracts were able to both stimulate and inhibit the growth of roots and shoots of the plant test crop, depending on the nutrient medium used. The findings emphasise the promise of further study of black truffle associated bacteria and their extracts in the context of plant growth regulation. Understanding the mechanisms of interaction between these microorganisms and plants may open new opportunities for agronomy.

1. Введение

Трюфели представляют собой уникальную группу подземных аскомицетов, которые формируют плодовые тела в тесном симбиозе с корнями растений. На всех этапах своего развития трюфели колонизированы разнообразными микроорганизмами, включая бактерии

. Бактерии, ассоциированные с плодовым телом трюфеля, могут участвовать в различных биологических процессах. Например, бактерии, ассоциированные с плодовым телом трюфеля, могут участвовать в установлении эктомикоризного симбиоза, регулировать коммуникации между другими симбионтными микроорганизмами и способствовать поглощению или фиксации минеральных веществ, таких как азот
. Это позволяет предположить, что бактерии, населяющие плодовые тела трюфелей, могут выступать в роли фитостимуляторов, положительно влияя на рост и развитие растений.

Существует ряд исследований, которые подтверждают способность бактериальных симбионтов регулировать рост растений. Например, они могут модулировать уровень фитогормонов в корнях растений, повышать доступность питательных веществ и подавлять развитие патогенной микрофлоры. Это не только способствует увеличению урожайности, но и повышает устойчивость растений к стрессовым условиям, таким как засуха, засоление или воздействие вредителей.

Понимание экологической значимости бактериального сообщества трюфелевых грибов может привести к разработке новых методов использования симбионтов трюфелей в сельском хозяйстве. Например, можно создать биопрепараты на основе бактериальных симбионтов трюфелей для повышения урожайности и качества сельскохозяйственных культур. Такие биопрепараты могут стать альтернативой химическим удобрениям и пестицидам, что будет способствовать развитию экологически чистого сельского хозяйства.

Целью данного исследования является первичная оценка разнообразия бактерий, ассоциированных с черным трюфелем Tuber macrosporum, и их способности регулировать рост семян Sinapis alba.

2. Методы и принципы исследования

Образцы плодовых тел черного трюфеля Tuber macrosporum были собраны в республике Адыгея и доставлены в г. Иркутск посредством авиасообщения в термостатируемых условиях — при температуре от +6 до  +10 °C. Далее образцы были промыты, очищены и стерилизованы 70% спиртом. Затем грибы были надломлены, стерильным скальпелем была вырезана сердцевина плодового тела, измельчена и зафиксирована в 20% растворе стерильного глицерина. 

Далее полученный водно-глицероловый экстракт был посеян газоном на твёрдые питательные среды. Для выделения бактерий-симбионтов трюфелевых грибов были выбраны следующие среды: MS (соевая мука — 20 г/л, D-маннит—20 г/л, агар—20 г/л, агар — 20 г/л), TSB (казеиновый пептон — 17 г/л, KH₂PO₄— 2,5 г/л, глюкоза — 2,5 г/л, NaCl — 5 г/л, соевый пептон — 3 г/л, агар — 20 г/л) и Гаузе-2 (триптон — 2,5 г/л, пептон — 5 г/л,  NaCl — 5 г/л, глюкоза — 10 5 г/л, агар — 20 г/л). Выделение микроорганизмов проводили в термостатируемых условиях при температуре +28 °C. Затем чистые культуры выделенных бактерий культивировали на питательной среде TSB. Идентификацию культур проводили посредством секвенирования, для чего ДНК выделяли калий-ацетатным методом

. Для проведения реакции ПЦР были использованы компоненты: универсальные эубактериальные праймеры 8F (5’- AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3’) и 1492R (5’- TAC GGY TAC CTT GTT ACG ACT T-3’), смесь для ПЦР 5X ScreenMix-HS и DMSO. ПЦР проводили с применением автоматического амплификатора Biometra (Германия). Реакцию проводили по следующей программе: первичная денатурация — 2 мин при 95 °C. Затем — 24 цикла, включающих: денатурацию при 95 °C — 30 сек., отжиг при 52 °C — 30 сек., удлинение при 72 °С — 1 мин. Окончательное удлинение проводили при 72°C в течение 5 мин. Очистку ПЦР-продуктов проводили с помощью набора для очистки ДНК «Cleanup» ЗАО «Евроген». Очищенные ПЦР-продукты отправляли на секвенирование в ЗАО «Евроген» (г. Москва). Нуклеотидные последовательности секвенировали методом Сэнгера. Контиги были собраны с применением программы BioEdit, а далее загружены в базу данных NCBI (под номерами: PV537302, PV537307-PV537311, PV537313-PV537318, PV537321-PV537324) для сравнения и идентификации.

Для проведения дальнейшего эксперимента выбирали 5 штаммов, принадлежащих к наиболее различающимся друг от друга родам. Затем проводили их глубинное культивирование на следующих питательных средах: TSB (казеиновый пептон — 17 г/л, KH₂PO₄— 2,5 г/л, глюкоза — 2,5 г/л, NaCl — 5 г/л, соевый пептон — 3 г/л), MM (L-аспарагин — 0,5 г/л, K2HPO4 — 0,5 г/л, MgSO4 × 7H2O — 0,2 г/л, FeSO4 × 7H2O — 0,01 г/л, глюкоза — 10 г/л), PDA (картофельный отвар — 1 л; декстроза — 20 г/л) при температуре +28 °С в течение 7 суток. Полученные пробы разделяли на биомассу и культуральную жидкость посредством центрифугирования при 3000 rpm, 20 мин. Для экстракции вторичных метаболитов из биомассы использовали смесь ацетона с метанолом в соотношении 1:1. Для экстракции внеклеточных метаболитов использовали этилацетат.

Помимо оценки воздействия симбиотических и бактериальных культур на прорастание семян, оценивали и воздействие плодовых тел грибов на рост растений. Для этого проводили экстракцию из плодовых тел трюфелевых грибов. В рамках данного эксперимента было взято 3 типа плодовых тел: высушенные в регидраторе и нарезанные слайсами, свежие и плодовые тела, высушенные посредством заморозки. Для проведения экстракции каждый образец трюфеля измельчали в фарфоровой ступке с добавлением метанола в соотношении 1:1.

В качестве тест-объекта были выбраны семена белой горчицы (Sinapis alba), предварительно стерилизованные в растворе 5% гипохлорита натрия в течение 5 мин, затем в 70% растворе этилового спирта в течение 2 мин и 1 мин в стерильной дистиллированной воде.  Далее в чашки Петри с внутренним диаметром 60 мм помещали диск фильтровальной бумаги, на котором равномерно размещали семена S. alba в количестве 2 шт. Каждый экстракт тестировали в трехкратной повторности. Чашки с семенами инкубировали в термостате при температуре +28 °С. Общее количество семян, участвовавших в эксперименте — 340 шт. В ходе эксперимента, у S. alba определяли длину корня и побега при концентрации экстракта 5 мг/мл. Продолжительность экспериментов составляла 7суток. Контролем выступали растения, обработанные стерильной водой.

Обработку результатов проводили с использованием программы Microsoft Office Excel. Сравнение выборочных средних проводили с использованием U-критерия Манна-Уитни. Предел погрешностей показан в виде отрезков на столбчатых диаграммах.

3. Основные результаты

В ходе исследования проведена первичная оценка разнообразия культивируемых бактерий, ассоциированных с черным трюфелем T. macrosporum. С помощью секвенирования фрагментов ДНК по гену 16S рРНК получены нуклеотидные последовательности, которые были выровнены с представителями других бактерий этих же родов в системе NCBI. В результате эксперимента было выделено более 40 чистых культур, из которых идентифицировано 18. Идентифицированные бактерии принадлежали таким родам, как Bacillus sp. (35%) Microbacterium sp. (35%), Lactococcus sp. (6%), Enterococcus sp. (6%), Plantibacter sp. (6%), Paenibacillus sp. (6%), Peribacillus sp. (6%) (Таблица 1).

Таблица 1 - Идентифицированные штаммы бактерий-симбионтов черного трюфеля T. macrosporum

Штамм

Схожие микроорганизмы

Регистрационный номер родственного штамма в системе NCBI

Идентичность, %

Cовпадение с последовательностью из системы NCBI, %

Microbacterium sp.

LPB2023S21

Microbacterium oxydans

штамм DSM 20578(T)

MH321609.1

 

99,93

 

100

 

Microbacterium sp. штамм FSd

OP314185.1

 

99,85

 

100

Microbacterium sp. штамм FT22

OP314189.1

99,85

100

Microbacterium sp.

LPB2023S32

Microbacterium sp. штамм WSR56

MZ905269.1

99,78

100

Microbacterium sp. штамм WSP380

 

MZ905264.1

99,78

100

Microbacterium sp. штамм y2

KT426691.1

99,71

100

Microbacterium sp.

LPB2023S43

Microbacterium sp. штамм WSR56

MZ905269.1

99,56

100

Microbacterium sp. штамм FQ911

OP314180.1

99,57

100

Microbacterium sp. штамм WSP380

MZ905264.1

99,56

100

Microbacterium sp.

LPB2023S54

Microbacterium sp. штамм FQ911

OP314180.1

97,61

100

Microbacterium sp. штамм S08

FJ002589.1

97,55

 

100

Microbacterium sp. штамм B-1132

DQ347555.1

97,47

100

Microbacterium sp.

LPB2023S7

Microbacterium sp. штамм FT31

OP314167.1

99,64

100

Microbacterium oxydans

штамм RS6J

 

MG547697.1

99,64

100

Microbacterium oxydans

штамм L0502

MT808738.1

99,64

100

Microbacterium sp.

LPB2023S95

Microbacterium sp. штамм FT31

 

OP314167.1

99,15

100

Microbacterium maritypicum

штамм XNh4

PP874463.1

99,15

100

Microbacterium sp. штамм InAD-055

MF401261.1

99,15

100

Paenibacillus sp.

LPB2023S6

 

Paenibacillus sp. штамм BAB-3408

KF917139.1

 

99,89

100

 

Paenibacillus dendritiformis

штамм PV3-16

MH472941.1

 

99,89

100

Paenibacillus dendritiformis

 штамм IBGE-MAB1

OP648144.1

99,89

100

Peribacillus sp.

LPB2023S23

 Peribacillus frigoritolerans

штамм V1202

ОР434104.1

99,93

100

 

Peribacillus frigoritolerans

штамм MRC_ES1_79

OK605809.1

99,93

 

100

Peribacillus frigoritolerans

штамм V5767

PP257131.1

99,93

 

100

Plantibacter sp. LPB2023S16

Plantibacter sp. штамм BEG503

LT628097.1

87,13

74

Plantibacter sp. штамм ICMP

MH392641.1

87,13

100

Plantibacter auratus штамм NJ-YK-2-B

MW928747.1

87,13

100

Вacillus sp. LPB2023S1

Bacillus weihenstephanensis штамм WSBC 10204

CP009746.1

99,86

100

Bacillus mycoides штамм WK46

ON799369.1

99,86

100

Bacillus mycoides штамм rKer2

ON644442.1

99,86

100

Вacillus sp. LPB2023S8

Bacillus albus

штамм GAU5

OM232457.1

90,96

100

100

100

 

Bacillus albus

штамм BLWW4

PQ160479.1

90,95

 

100

Bacillus anthracis штамм T0-12

MN330086.1

89,82

100

Вacillus sp. LPB2023S10

Bacillus sp.

штамм L

OL413468.1

97,62

100

 

Bacillus thuringiensis

штамм NO.8

MN509082.1

97,56

 

100

Bacillus cereus штамм CR2

OQ940650.1

97,62

 

100

Вacillus sp. LPB2023S11

 Bacillus albus

штамм GAU5

OM232457.1

91,89

99

 

Bacillus anthracis

штамм T0-12

PQ160479.1

91,87

 

99

Bacillus anthracis

штамм 1969  

MN330086.1

91,08

100

Вacillus sp. LPB2023S14

Bacillus albus

штамм GAU5

OM232457.1

91,70

99

 

Bacillus albus

штамм BLWW4

PQ160479.1

91,74

 

99

Bacillus cereus штамм F45

MK559557.1

91,64

99

Вacillus sp. LPB2023S15

Bacillus albus

штамм GAU5

OM232457.1

 

92,28

100

 

Bacillus albus

штамм BLWW4

 

PQ160479.1

92,26

 

100

Bacillus anthracis штамм T0-12

MN330086.1

90,97

100

Enterococcus sp. LPB2023S71

Enterococcus malodoratus

штамм AT5L204

MW468101.1

99,51

100

 

Enterococcus malodoratus

штамм JCM 8730

 

LC097068.1

99,51

100

Enterococcus malodoratus

штамм ATCC 43197

NR_114453.1

 

99,51

100

Lactococcus sp.

LPB2023S91

Lactococcus lactis

штамм N56

OQ405927.1

99,93

100

 

Lactococcus lactis штамм YSF2

OR482623.1

 

99,93

 

100

Lactococcus lactis штамм M3

OQ224981.1

99,93

 

100

Показано, что в контрольных условиях длина корней проростков семян S. alba составила, в среднем 35,33 ± 20,03 мм. При обработке семян экстрактом культуральной жидкости штамма Peribacillus sp., выращенного на среде ММ, наблюдали статистически значимую индукция роста корня. Длина корня при этом составляла, в среднем, 87,8 ± 18,1 мм. Также отмечено статистически значимое ингибирование роста корня проростков S. alba до отметки 23 ± 11,8 мм, в среднем, экстрактом внеклеточных метаболитов штамма Microbacterium sp., выращенного на питательной среде TSB. Для побегов семян S. аlba, пророщенных в контрольных условиях, установлена средняя длина 15,7 ± 5,6 мм. При обработке семян экстрактом культуральной жидкости штамма Paenibacillus sp, выращенного на среде TSB, наблюдали выраженное ингибирование роста побегов до 2,3 ± 1,3 мм. В то же время экстракты этого же штамма, выращенного на среде PDA, способны статистически значимо увеличивать рост побегов до 22,9 ± 10,4 мм (рис. 1).

Длина побега (А) и корня (Б) 7-суточных проростков семян S. alba при обработке экстрактами культуральной жидкости бактерий-симбионтов черного трюфеля

Рисунок 1 - Длина побега (А) и корня (Б) 7-суточных проростков семян S. alba при обработке экстрактами культуральной жидкости бактерий-симбионтов черного трюфеля

Примечание: символом «*» отмечены статистически отличные данные от контроля

При обработке семян белой горчицы экстрактами биомассы штамма Plantibacter sp., культивированного на питательной среде ММ, отмечали статистически значимое увеличивание длины корней до отметки 72,1 ± 36,19 мм. Внутриклеточные вторичные метаболиты бактерий-симбионтов трюфеля, культивированных на среде PDA, не оказывали статистически-значимых эффектов на длину корней 7-суточных проростков белой горчицы. Среди экстрактов, выделенных из биомассы всех исследуемых штаммов, только штамм рода Microbacterium sp. оказывал статистически значимый стимулирующий эффект, удлиняя побеги до 35,3 ± 7,06 мм. Обратный эффект на проростки семян S. alba оказали экстракты биомассы штамма Plantibacter sp., культивированного на питательной среде TSB. Данные экстракты статистически значимо ингибировали рост побегов тест-растений до отметки 2,33 ± 1,9 мм (рис. 2).
Длина побега (А) и корня (Б) 7-суточных проростков семян Sinapis alba при обработке экстрактами биомассы бактерий-симбионтов черного трюфеля

Рисунок 2 - Длина побега (А) и корня (Б) 7-суточных проростков семян Sinapis alba при обработке экстрактами биомассы бактерий-симбионтов черного трюфеля

Примечание: символом «*» отмечены статистически отличные данные от контроля

Экстракты черного трюфеля оказывали незначительное воздействие на прорастание семян S. аlba. Наибольшее воздействие оказали экстракты регидрированных слайсов грибов. Длина корней таких растений в среднем составляла 50,45± 24,9 мм (рис. 3).
Длина побега (А) и корня (Б) 7-суточных проростков семян Sinapis alba при обработке экстрактами черного трюфеля

Рисунок 3 - Длина побега (А) и корня (Б) 7-суточных проростков семян Sinapis alba при обработке экстрактами черного трюфеля

Примечание: символом «*» отмечены статистически отличные данные от контроля; СС – экстракты сушеных слайсов плодовых тел черного трюфеля; СЗ – экстракты сушеных замороженных плодовых тел черного трюфеля; З – экстракты замороженных плодовых тел черного трюфеля

4. Обсуждение

В рамках проведённого исследования была выполнена первичная оценка разнообразия бактерий, ассоциированных с чёрным трюфелем. Для этого использовали метод секвенирования фрагментов ДНК по гену 16S рРНК. Анализ полученных данных показал, что среди культивируемых симбионтов чёрного трюфеля были обнаружены представители следующих родов бактерий: Bacillus sp., Microbacterium sp., Lactococcus sp., Enterococcus sp., Plantibacter sp., Paenibacillus sp., Peribacillus sp. Эти бактерии широко распространены в окружающей среде и могут играть важную роль в экосистемах. Особое внимание привлекли бактерии родов Microbacterium sp., Plantibacter sp., Paenibacillus sp. и Peribacillus sp., так как они известны своей способностью регулировать рост растений. Именно эти штаммы были выбраны для дальнейшего изучения в рамках исследования. Кроме того, было отмечено, что бактерии рода Bacillus и Lactococcus способны проявлять антагонистическую активность в отношении множества патогенов растений. Это означает, что они могут подавлять рост и развитие вредных микроорганизмов, защищая растения от болезней. Бактерии рода Bacillus также известны своим положительным влиянием на рост и иммунитет сельскохозяйственных культур, что делает их перспективными кандидатами для использования в агротехнологиях

,
. Также известно, что ризобактерии рода Peribacillus sp. и актинобактерии рода Microbacterium способны продуцировать вещества ауксиновой природы. Штаммы бактерий Paenibacillus sp. способствуют росту сельскохозяйственных культур посредством фиксации азота и производства фитогормона индол-3-уксусной кислоты
,
,
.

Эксперименты с использованием метанольных экстрактов чёрного трюфеля и экстрактов, выделенных из биомассы и культуральной жидкости его бактерий-симбионтов, продемонстрировали заметное влияние на прорастающие семена S. alba. В частности, было обнаружено, что экстракт культуральной жидкости штамма Peribacillus sp. стимулирует увеличение длины корня. Это указывает на способность данного штамма выделять в окружающую среду фитогормоны, которые могут влиять на рост растений. Этот вывод подтверждается исследованием Rodríguez et al., 2022, в котором показано, что штамм Peribacillus sp. способствует росту томатов. Кроме того, у этого штамма обнаружены гены, ответственные за синтез веществ ауксиновой природы, что также указывает на его способность стимулировать рост растений

.

С другой стороны, эксперименты с экстрактами, содержащими внеклеточные метаболиты штамма Microbacterium sp., культивированного на среде TSB, показали ингибирование роста корней проростков. Это указывает на возможное наличие в этих экстрактах соединений с антагонистическими свойствами, которые могут подавлять рост растений. Однако в ходе исследования также было обнаружено, что экстракты биомассы Microbacterium sp., выращенной на среде MM, наоборот, способны стимулировать рост растений. Это подчёркивает значимость условий культивирования бактерий и состава используемых сред, которые могут существенно влиять на свойства получаемых экстрактов.

Литературные источники также содержат упоминания о способности экстрактов бактерий рода Microbacterium sp. стимулировать рост растений. Это подтверждает предположение о том, что бактерии этого рода могут вырабатывать вещества, положительно влияющие на развитие растений, хотя конкретные механизмы и действующие компоненты требуют дальнейшего изучения

. Исследование взаимодействия микроорганизмов-симбионтов трюфеля с растениями имеет большое значение для понимания их биологических эффектов. Возможно, соединения, которые синтезирует микроорганизм, играют ключевую роль в процессах микоризообразования и формирования плодового тела трюфеля. Детальное изучение этих взаимодействий может помочь выявить механизмы, с помощью которых микроорганизмы влияют на рост и развитие растений. Это, в свою очередь, может привести к разработке новых методов улучшения плодородия почвы и повышения урожайности сельскохозяйственных культур. Кроме того, понимание роли микроорганизмов в формировании плодового тела трюфеля может способствовать развитию методов культивирования трюфелей в искусственных условиях. Это откроет новые возможности для промышленного производства этих ценных грибов и изучения их свойств.

Представляется значимым отметить, что экстракты биомассы штамма Plantibacter sp., культивированного на среде ММ, значительно увеличили длину корней у семян белой горчицы. В то же время экстракты того же штамма, выращенного на среде PDA, не оказали заметного влияния. Это наблюдение подчёркивает, как среда культивирования может влиять на метаболический профиль бактерий и, соответственно, на их взаимодействие с растениями. Результаты исследования фитостимулирующих эффектов экстрактов плодовых тел чёрных трюфелей показали, что сами по себе экстракты не оказывали значительного влияния на рост семян S. alba. Однако экстракты из сушёных слайсов трюфелей смогли стимулировать рост корней белой горчицы. Это указывает на то, что определённые соединения, входящие в состав чёрного трюфеля, сохраняют свои свойства даже после высушивания и длительного хранения. Полученные данные подчёркивают перспективность дальнейшего изучения бактерий, ассоциированных с чёрным трюфелем, и их экстрактов в контексте регуляции роста растений. Понимание механизмов взаимодействия между этими микроорганизмами и растениями может открыть новые возможности для агрономии. Например, использование этих бактерий может помочь повысить урожайность и устойчивость сельскохозяйственных культур к неблагоприятным условиям.

5. Заключение

Таким образом, проведенное исследование выявило несколько уникальных родов культивируемых симбиотических бактерий, включая роды Bacillus sp., Microbacterium sp., Lactococcus sp., Enterococcus sp., Plantibacter sp., Paenibacillus sp. и Peribacillus sp. Особое внимание уделено таким штаммам, как Microbacterium sp., Plantibacter sp., Paenibacillus sp. и Peribacillus sp., благодаря их способности регулировать рост и развитие растений. Эксперименты с экстрактами данных бактерий продемонстрировали как стимулирующие, так и ингибирующие эффекты на прорастающие семена белой горчицы (S. alba) в зависимости от выбора питательной среды для их культивации. Например, экстракт, содержащий внеклеточные метаболиты штамма Microbacterium sp., культивированного на среде TSB, показал ингибирование роста корней проростков, в то время как экстракт того же типа данного штамма при культивации на питательной среде ММ показывает увеличение роста побега проростков.

Кроме того, результаты показали, что экстракты плодовых тел черного трюфеля, несмотря на отсутствие значимого эффекта на семена S. alba, все же способны стимулировать рост корней у проростков белой горчицы. Об этом свидетельствует статистически значимое увеличение длины корня проростков S. alba при обработке семян экстрактами сушеных слайсов трюфелевых грибов. Кроме того, данная особенность подтверждает сохранение биологически активных соединений даже после высушивания и длительного хранения.

Так, исследования взаимодействий микроорганизмов-симбионтов трюфеля с растениями имеют большое значение для понимания их биологических эффектов. Возможно, соединения, которые синтезируют микроорганизмы, играют ключевую роль в процессах микоризообразования и формирования плодового тела трюфеля. Детальное изучение этих взаимодействий может помочь выявить механизмы, с помощью которых микроорганизмы влияют на рост и развитие растений, что открывает новые горизонты для их использования в агрономии и биотехнологии.

Article metrics

Views:23
Downloads:2
Views
Total:
Views:23