ANALYSIS OF THE ABILITY OF BACTERIAL SYMBIONTS OF BLACK TRUFFLE FUNGI TO REGULATE PLANT GROWTH
ANALYSIS OF THE ABILITY OF BACTERIAL SYMBIONTS OF BLACK TRUFFLE FUNGI TO REGULATE PLANT GROWTH
Abstract
Truffles are cup fungi that form fruiting bodies in association with plant roots and soil microorganisms, the role of which has not been fully explored. It is known that many of these microorganisms are able to modify phytohormone levels, increase nutrient availability and suppress pathogens, which may have positive effects on plant growth and resistance. Thus, the aim of this study was to initially evaluate the diversity of bacteria associated with black truffle Tuber macrosporum and their ability to regulate Sinapis alba seed growth. Four genera of truffle symbiont bacteria, Paenibacillus sp., Peribacillus sp., Plantibacter sp. and Microbacterium sp. were selected for the study and cultured on different nutrient media. The extracts of these bacteria were assessed for their effect on white mustard seed growth. The results showed that the tested extracts were able to both stimulate and inhibit the growth of roots and shoots of the plant test crop, depending on the nutrient medium used. The findings emphasise the promise of further study of black truffle associated bacteria and their extracts in the context of plant growth regulation. Understanding the mechanisms of interaction between these microorganisms and plants may open new opportunities for agronomy.
1. Введение
Трюфели представляют собой уникальную группу подземных аскомицетов, которые формируют плодовые тела в тесном симбиозе с корнями растений. На всех этапах своего развития трюфели колонизированы разнообразными микроорганизмами, включая бактерии . Бактерии, ассоциированные с плодовым телом трюфеля, могут участвовать в различных биологических процессах. Например, бактерии, ассоциированные с плодовым телом трюфеля, могут участвовать в установлении эктомикоризного симбиоза, регулировать коммуникации между другими симбионтными микроорганизмами и способствовать поглощению или фиксации минеральных веществ, таких как азот . Это позволяет предположить, что бактерии, населяющие плодовые тела трюфелей, могут выступать в роли фитостимуляторов, положительно влияя на рост и развитие растений.
Существует ряд исследований, которые подтверждают способность бактериальных симбионтов регулировать рост растений. Например, они могут модулировать уровень фитогормонов в корнях растений, повышать доступность питательных веществ и подавлять развитие патогенной микрофлоры. Это не только способствует увеличению урожайности, но и повышает устойчивость растений к стрессовым условиям, таким как засуха, засоление или воздействие вредителей.
Понимание экологической значимости бактериального сообщества трюфелевых грибов может привести к разработке новых методов использования симбионтов трюфелей в сельском хозяйстве. Например, можно создать биопрепараты на основе бактериальных симбионтов трюфелей для повышения урожайности и качества сельскохозяйственных культур. Такие биопрепараты могут стать альтернативой химическим удобрениям и пестицидам, что будет способствовать развитию экологически чистого сельского хозяйства.
Целью данного исследования является первичная оценка разнообразия бактерий, ассоциированных с черным трюфелем Tuber macrosporum, и их способности регулировать рост семян Sinapis alba.
2. Методы и принципы исследования
Образцы плодовых тел черного трюфеля Tuber macrosporum были собраны в республике Адыгея и доставлены в г. Иркутск посредством авиасообщения в термостатируемых условиях — при температуре от +6 до +10 °C. Далее образцы были промыты, очищены и стерилизованы 70% спиртом. Затем грибы были надломлены, стерильным скальпелем была вырезана сердцевина плодового тела, измельчена и зафиксирована в 20% растворе стерильного глицерина.
Далее полученный водно-глицероловый экстракт был посеян газоном на твёрдые питательные среды. Для выделения бактерий-симбионтов трюфелевых грибов были выбраны следующие среды: MS (соевая мука — 20 г/л, D-маннит—20 г/л, агар—20 г/л, агар — 20 г/л), TSB (казеиновый пептон — 17 г/л, KH₂PO₄— 2,5 г/л, глюкоза — 2,5 г/л, NaCl — 5 г/л, соевый пептон — 3 г/л, агар — 20 г/л) и Гаузе-2 (триптон — 2,5 г/л, пептон — 5 г/л, NaCl — 5 г/л, глюкоза — 10 5 г/л, агар — 20 г/л). Выделение микроорганизмов проводили в термостатируемых условиях при температуре +28 °C. Затем чистые культуры выделенных бактерий культивировали на питательной среде TSB. Идентификацию культур проводили посредством секвенирования, для чего ДНК выделяли калий-ацетатным методом . Для проведения реакции ПЦР были использованы компоненты: универсальные эубактериальные праймеры 8F (5’- AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3’) и 1492R (5’- TAC GGY TAC CTT GTT ACG ACT T-3’), смесь для ПЦР 5X ScreenMix-HS и DMSO. ПЦР проводили с применением автоматического амплификатора Biometra (Германия). Реакцию проводили по следующей программе: первичная денатурация — 2 мин при 95 °C. Затем — 24 цикла, включающих: денатурацию при 95 °C — 30 сек., отжиг при 52 °C — 30 сек., удлинение при 72 °С — 1 мин. Окончательное удлинение проводили при 72°C в течение 5 мин. Очистку ПЦР-продуктов проводили с помощью набора для очистки ДНК «Cleanup» ЗАО «Евроген». Очищенные ПЦР-продукты отправляли на секвенирование в ЗАО «Евроген» (г. Москва). Нуклеотидные последовательности секвенировали методом Сэнгера. Контиги были собраны с применением программы BioEdit, а далее загружены в базу данных NCBI (под номерами: PV537302, PV537307-PV537311, PV537313-PV537318, PV537321-PV537324) для сравнения и идентификации.
Для проведения дальнейшего эксперимента выбирали 5 штаммов, принадлежащих к наиболее различающимся друг от друга родам. Затем проводили их глубинное культивирование на следующих питательных средах: TSB (казеиновый пептон — 17 г/л, KH₂PO₄— 2,5 г/л, глюкоза — 2,5 г/л, NaCl — 5 г/л, соевый пептон — 3 г/л), MM (L-аспарагин — 0,5 г/л, K2HPO4 — 0,5 г/л, MgSO4 × 7H2O — 0,2 г/л, FeSO4 × 7H2O — 0,01 г/л, глюкоза — 10 г/л), PDA (картофельный отвар — 1 л; декстроза — 20 г/л) при температуре +28 °С в течение 7 суток. Полученные пробы разделяли на биомассу и культуральную жидкость посредством центрифугирования при 3000 rpm, 20 мин. Для экстракции вторичных метаболитов из биомассы использовали смесь ацетона с метанолом в соотношении 1:1. Для экстракции внеклеточных метаболитов использовали этилацетат.
Помимо оценки воздействия симбиотических и бактериальных культур на прорастание семян, оценивали и воздействие плодовых тел грибов на рост растений. Для этого проводили экстракцию из плодовых тел трюфелевых грибов. В рамках данного эксперимента было взято 3 типа плодовых тел: высушенные в регидраторе и нарезанные слайсами, свежие и плодовые тела, высушенные посредством заморозки. Для проведения экстракции каждый образец трюфеля измельчали в фарфоровой ступке с добавлением метанола в соотношении 1:1.
В качестве тест-объекта были выбраны семена белой горчицы (Sinapis alba), предварительно стерилизованные в растворе 5% гипохлорита натрия в течение 5 мин, затем в 70% растворе этилового спирта в течение 2 мин и 1 мин в стерильной дистиллированной воде. Далее в чашки Петри с внутренним диаметром 60 мм помещали диск фильтровальной бумаги, на котором равномерно размещали семена S. alba в количестве 2 шт. Каждый экстракт тестировали в трехкратной повторности. Чашки с семенами инкубировали в термостате при температуре +28 °С. Общее количество семян, участвовавших в эксперименте — 340 шт. В ходе эксперимента, у S. alba определяли длину корня и побега при концентрации экстракта 5 мг/мл. Продолжительность экспериментов составляла 7суток. Контролем выступали растения, обработанные стерильной водой.
Обработку результатов проводили с использованием программы Microsoft Office Excel. Сравнение выборочных средних проводили с использованием U-критерия Манна-Уитни. Предел погрешностей показан в виде отрезков на столбчатых диаграммах.
3. Основные результаты
В ходе исследования проведена первичная оценка разнообразия культивируемых бактерий, ассоциированных с черным трюфелем T. macrosporum. С помощью секвенирования фрагментов ДНК по гену 16S рРНК получены нуклеотидные последовательности, которые были выровнены с представителями других бактерий этих же родов в системе NCBI. В результате эксперимента было выделено более 40 чистых культур, из которых идентифицировано 18. Идентифицированные бактерии принадлежали таким родам, как Bacillus sp. (35%) Microbacterium sp. (35%), Lactococcus sp. (6%), Enterococcus sp. (6%), Plantibacter sp. (6%), Paenibacillus sp. (6%), Peribacillus sp. (6%) (Таблица 1).
Таблица 1 - Идентифицированные штаммы бактерий-симбионтов черного трюфеля T. macrosporum
Штамм | Схожие микроорганизмы | Регистрационный номер родственного штамма в системе NCBI | Идентичность, % | Cовпадение с последовательностью из системы NCBI, % |
Microbacterium sp. LPB2023S21 | Microbacterium oxydans штамм DSM 20578(T) | MH321609.1
| 99,93
| 100
|
Microbacterium sp. штамм FSd | OP314185.1
| 99,85
| 100 | |
Microbacterium sp. штамм FT22 | OP314189.1 | 99,85 | 100 | |
Microbacterium sp. LPB2023S32 | Microbacterium sp. штамм WSR56 | MZ905269.1 | 99,78 | 100 |
Microbacterium sp. штамм WSP380
| MZ905264.1 | 99,78 | 100 | |
Microbacterium sp. штамм y2 | KT426691.1 | 99,71 | 100 | |
Microbacterium sp. LPB2023S43 | Microbacterium sp. штамм WSR56 | MZ905269.1 | 99,56 | 100 |
Microbacterium sp. штамм FQ911 | OP314180.1 | 99,57 | 100 | |
Microbacterium sp. штамм WSP380 | MZ905264.1 | 99,56 | 100 | |
Microbacterium sp. LPB2023S54 | Microbacterium sp. штамм FQ911 | OP314180.1 | 97,61 | 100 |
Microbacterium sp. штамм S08 | FJ002589.1 | 97,55
| 100 | |
Microbacterium sp. штамм B-1132 | DQ347555.1 | 97,47 | 100 | |
Microbacterium sp. LPB2023S7 | Microbacterium sp. штамм FT31 | OP314167.1 | 99,64 | 100 |
Microbacterium oxydans штамм RS6J
| MG547697.1 | 99,64 | 100 | |
Microbacterium oxydans штамм L0502 | MT808738.1 | 99,64 | 100 | |
Microbacterium sp. LPB2023S95 | Microbacterium sp. штамм FT31
| OP314167.1 | 99,15 | 100 |
Microbacterium maritypicum штамм XNh4 | PP874463.1 | 99,15 | 100 | |
Microbacterium sp. штамм InAD-055 | MF401261.1 | 99,15 | 100 | |
Paenibacillus sp. LPB2023S6
| Paenibacillus sp. штамм BAB-3408 | KF917139.1
| 99,89 | 100
|
Paenibacillus dendritiformis штамм PV3-16 | MH472941.1
| 99,89 | 100 | |
Paenibacillus dendritiformis штамм IBGE-MAB1 | OP648144.1 | 99,89 | 100 | |
Peribacillus sp. LPB2023S23 | Peribacillus frigoritolerans штамм V1202 | ОР434104.1 | 99,93 | 100
|
Peribacillus frigoritolerans штамм MRC_ES1_79 | OK605809.1 | 99,93
| 100 | |
Peribacillus frigoritolerans штамм V5767 | PP257131.1 | 99,93
| 100 | |
Plantibacter sp. LPB2023S16 | Plantibacter sp. штамм BEG503 | LT628097.1 | 87,13 | 74 |
Plantibacter sp. штамм ICMP | MH392641.1 | 87,13 | 100 | |
Plantibacter auratus штамм NJ-YK-2-B | MW928747.1 | 87,13 | 100 | |
Вacillus sp. LPB2023S1 | Bacillus weihenstephanensis штамм WSBC 10204 | CP009746.1 | 99,86 | 100 |
Bacillus mycoides штамм WK46 | ON799369.1 | 99,86 | 100 | |
Bacillus mycoides штамм rKer2 | ON644442.1 | 99,86 | 100 | |
Вacillus sp. LPB2023S8 | Bacillus albus штамм GAU5 | OM232457.1 | 90,96 | 100 100 100
|
Bacillus albus штамм BLWW4 | PQ160479.1 | 90,95
| 100 | |
Bacillus anthracis штамм T0-12 | MN330086.1 | 89,82 | 100 | |
Вacillus sp. LPB2023S10 | Bacillus sp. штамм L | OL413468.1 | 97,62 | 100
|
Bacillus thuringiensis штамм NO.8 | MN509082.1 | 97,56
| 100 | |
Bacillus cereus штамм CR2 | OQ940650.1 | 97,62
| 100 | |
Вacillus sp. LPB2023S11 | Bacillus albus штамм GAU5 | OM232457.1 | 91,89 | 99
|
Bacillus anthracis штамм T0-12 | PQ160479.1 | 91,87
| 99 | |
Bacillus anthracis штамм 1969 | MN330086.1 | 91,08 | 100 | |
Вacillus sp. LPB2023S14 | Bacillus albus штамм GAU5 | OM232457.1 | 91,70 | 99
|
Bacillus albus штамм BLWW4 | PQ160479.1 | 91,74
| 99 | |
Bacillus cereus штамм F45 | MK559557.1 | 91,64 | 99 | |
Вacillus sp. LPB2023S15 | Bacillus albus штамм GAU5 | OM232457.1
| 92,28 | 100
|
Bacillus albus штамм BLWW4
| PQ160479.1 | 92,26
| 100 | |
Bacillus anthracis штамм T0-12 | MN330086.1 | 90,97 | 100 | |
Enterococcus sp. LPB2023S71 | Enterococcus malodoratus штамм AT5L204 | MW468101.1 | 99,51 | 100
|
Enterococcus malodoratus штамм JCM 8730
| LC097068.1 | 99,51 | 100 | |
Enterococcus malodoratus штамм ATCC 43197 | NR_114453.1
| 99,51 | 100 | |
Lactococcus sp. LPB2023S91 | Lactococcus lactis штамм N56 | OQ405927.1 | 99,93 | 100
|
Lactococcus lactis штамм YSF2 | OR482623.1
| 99,93
| 100 | |
Lactococcus lactis штамм M3 | OQ224981.1 | 99,93
| 100 |
Показано, что в контрольных условиях длина корней проростков семян S. alba составила, в среднем 35,33 ± 20,03 мм. При обработке семян экстрактом культуральной жидкости штамма Peribacillus sp., выращенного на среде ММ, наблюдали статистически значимую индукция роста корня. Длина корня при этом составляла, в среднем, 87,8 ± 18,1 мм. Также отмечено статистически значимое ингибирование роста корня проростков S. alba до отметки 23 ± 11,8 мм, в среднем, экстрактом внеклеточных метаболитов штамма Microbacterium sp., выращенного на питательной среде TSB. Для побегов семян S. аlba, пророщенных в контрольных условиях, установлена средняя длина 15,7 ± 5,6 мм. При обработке семян экстрактом культуральной жидкости штамма Paenibacillus sp, выращенного на среде TSB, наблюдали выраженное ингибирование роста побегов до 2,3 ± 1,3 мм. В то же время экстракты этого же штамма, выращенного на среде PDA, способны статистически значимо увеличивать рост побегов до 22,9 ± 10,4 мм (рис. 1).

Рисунок 1 - Длина побега (А) и корня (Б) 7-суточных проростков семян S. alba при обработке экстрактами культуральной жидкости бактерий-симбионтов черного трюфеля
Примечание: символом «*» отмечены статистически отличные данные от контроля

Рисунок 2 - Длина побега (А) и корня (Б) 7-суточных проростков семян Sinapis alba при обработке экстрактами биомассы бактерий-симбионтов черного трюфеля
Примечание: символом «*» отмечены статистически отличные данные от контроля

Рисунок 3 - Длина побега (А) и корня (Б) 7-суточных проростков семян Sinapis alba при обработке экстрактами черного трюфеля
Примечание: символом «*» отмечены статистически отличные данные от контроля; СС – экстракты сушеных слайсов плодовых тел черного трюфеля; СЗ – экстракты сушеных замороженных плодовых тел черного трюфеля; З – экстракты замороженных плодовых тел черного трюфеля
4. Обсуждение
В рамках проведённого исследования была выполнена первичная оценка разнообразия бактерий, ассоциированных с чёрным трюфелем. Для этого использовали метод секвенирования фрагментов ДНК по гену 16S рРНК. Анализ полученных данных показал, что среди культивируемых симбионтов чёрного трюфеля были обнаружены представители следующих родов бактерий: Bacillus sp., Microbacterium sp., Lactococcus sp., Enterococcus sp., Plantibacter sp., Paenibacillus sp., Peribacillus sp. Эти бактерии широко распространены в окружающей среде и могут играть важную роль в экосистемах. Особое внимание привлекли бактерии родов Microbacterium sp., Plantibacter sp., Paenibacillus sp. и Peribacillus sp., так как они известны своей способностью регулировать рост растений. Именно эти штаммы были выбраны для дальнейшего изучения в рамках исследования. Кроме того, было отмечено, что бактерии рода Bacillus и Lactococcus способны проявлять антагонистическую активность в отношении множества патогенов растений. Это означает, что они могут подавлять рост и развитие вредных микроорганизмов, защищая растения от болезней. Бактерии рода Bacillus также известны своим положительным влиянием на рост и иммунитет сельскохозяйственных культур, что делает их перспективными кандидатами для использования в агротехнологиях , . Также известно, что ризобактерии рода Peribacillus sp. и актинобактерии рода Microbacterium способны продуцировать вещества ауксиновой природы. Штаммы бактерий Paenibacillus sp. способствуют росту сельскохозяйственных культур посредством фиксации азота и производства фитогормона индол-3-уксусной кислоты , , .
Эксперименты с использованием метанольных экстрактов чёрного трюфеля и экстрактов, выделенных из биомассы и культуральной жидкости его бактерий-симбионтов, продемонстрировали заметное влияние на прорастающие семена S. alba. В частности, было обнаружено, что экстракт культуральной жидкости штамма Peribacillus sp. стимулирует увеличение длины корня. Это указывает на способность данного штамма выделять в окружающую среду фитогормоны, которые могут влиять на рост растений. Этот вывод подтверждается исследованием Rodríguez et al., 2022, в котором показано, что штамм Peribacillus sp. способствует росту томатов. Кроме того, у этого штамма обнаружены гены, ответственные за синтез веществ ауксиновой природы, что также указывает на его способность стимулировать рост растений .
С другой стороны, эксперименты с экстрактами, содержащими внеклеточные метаболиты штамма Microbacterium sp., культивированного на среде TSB, показали ингибирование роста корней проростков. Это указывает на возможное наличие в этих экстрактах соединений с антагонистическими свойствами, которые могут подавлять рост растений. Однако в ходе исследования также было обнаружено, что экстракты биомассы Microbacterium sp., выращенной на среде MM, наоборот, способны стимулировать рост растений. Это подчёркивает значимость условий культивирования бактерий и состава используемых сред, которые могут существенно влиять на свойства получаемых экстрактов.
Литературные источники также содержат упоминания о способности экстрактов бактерий рода Microbacterium sp. стимулировать рост растений. Это подтверждает предположение о том, что бактерии этого рода могут вырабатывать вещества, положительно влияющие на развитие растений, хотя конкретные механизмы и действующие компоненты требуют дальнейшего изучения . Исследование взаимодействия микроорганизмов-симбионтов трюфеля с растениями имеет большое значение для понимания их биологических эффектов. Возможно, соединения, которые синтезирует микроорганизм, играют ключевую роль в процессах микоризообразования и формирования плодового тела трюфеля. Детальное изучение этих взаимодействий может помочь выявить механизмы, с помощью которых микроорганизмы влияют на рост и развитие растений. Это, в свою очередь, может привести к разработке новых методов улучшения плодородия почвы и повышения урожайности сельскохозяйственных культур. Кроме того, понимание роли микроорганизмов в формировании плодового тела трюфеля может способствовать развитию методов культивирования трюфелей в искусственных условиях. Это откроет новые возможности для промышленного производства этих ценных грибов и изучения их свойств.
Представляется значимым отметить, что экстракты биомассы штамма Plantibacter sp., культивированного на среде ММ, значительно увеличили длину корней у семян белой горчицы. В то же время экстракты того же штамма, выращенного на среде PDA, не оказали заметного влияния. Это наблюдение подчёркивает, как среда культивирования может влиять на метаболический профиль бактерий и, соответственно, на их взаимодействие с растениями. Результаты исследования фитостимулирующих эффектов экстрактов плодовых тел чёрных трюфелей показали, что сами по себе экстракты не оказывали значительного влияния на рост семян S. alba. Однако экстракты из сушёных слайсов трюфелей смогли стимулировать рост корней белой горчицы. Это указывает на то, что определённые соединения, входящие в состав чёрного трюфеля, сохраняют свои свойства даже после высушивания и длительного хранения. Полученные данные подчёркивают перспективность дальнейшего изучения бактерий, ассоциированных с чёрным трюфелем, и их экстрактов в контексте регуляции роста растений. Понимание механизмов взаимодействия между этими микроорганизмами и растениями может открыть новые возможности для агрономии. Например, использование этих бактерий может помочь повысить урожайность и устойчивость сельскохозяйственных культур к неблагоприятным условиям.
5. Заключение
Таким образом, проведенное исследование выявило несколько уникальных родов культивируемых симбиотических бактерий, включая роды Bacillus sp., Microbacterium sp., Lactococcus sp., Enterococcus sp., Plantibacter sp., Paenibacillus sp. и Peribacillus sp. Особое внимание уделено таким штаммам, как Microbacterium sp., Plantibacter sp., Paenibacillus sp. и Peribacillus sp., благодаря их способности регулировать рост и развитие растений. Эксперименты с экстрактами данных бактерий продемонстрировали как стимулирующие, так и ингибирующие эффекты на прорастающие семена белой горчицы (S. alba) в зависимости от выбора питательной среды для их культивации. Например, экстракт, содержащий внеклеточные метаболиты штамма Microbacterium sp., культивированного на среде TSB, показал ингибирование роста корней проростков, в то время как экстракт того же типа данного штамма при культивации на питательной среде ММ показывает увеличение роста побега проростков.
Кроме того, результаты показали, что экстракты плодовых тел черного трюфеля, несмотря на отсутствие значимого эффекта на семена S. alba, все же способны стимулировать рост корней у проростков белой горчицы. Об этом свидетельствует статистически значимое увеличение длины корня проростков S. alba при обработке семян экстрактами сушеных слайсов трюфелевых грибов. Кроме того, данная особенность подтверждает сохранение биологически активных соединений даже после высушивания и длительного хранения.
Так, исследования взаимодействий микроорганизмов-симбионтов трюфеля с растениями имеют большое значение для понимания их биологических эффектов. Возможно, соединения, которые синтезируют микроорганизмы, играют ключевую роль в процессах микоризообразования и формирования плодового тела трюфеля. Детальное изучение этих взаимодействий может помочь выявить механизмы, с помощью которых микроорганизмы влияют на рост и развитие растений, что открывает новые горизонты для их использования в агрономии и биотехнологии.