ОЦЕНКА ДОБРОКАЧЕСТВЕННОСТИ ПЫЛЬЦЫ ХВОЙНЫХ ВИДОВ МЕТОДОМ ОКРАШИВАНИЯ ПЫЛЬЦЕВЫХ ЗЕРЕН ФЛУОРЕСЦЕИН ДИАЦЕТАТОМ
Аннотация
Приведены результаты сравнительного изучения показателей качества пыльцы сосны (Pinus sylvestris L.), ели (Picea abies (L.) Karst. x P. obovata Ledeb.) и можжевельника (Juniperus communis L.) методом проращивания in vitro и окрашиванием пыльцевых зерен флуоресцеин диацетатом. Предложены способы расчета показателя доброкачественности пыльцы хвойных видов, различающихся по биологии прорастания пыльцы. В 91 % случаев между показателем жизнеспособности пыльцы, определенным путем проращивания и ее доброкачественностью всех изученных видов наблюдалась высокая (50 < r < 75), или очень высокая (r ≥ 75) положительная корреляция. Показано, что окрашивание пыльцевых зерен флуоресцеин диацетатом можно использовать в качестве экспресс-метода оценки доброкачественности пыльцы хвойных видов.
Полный текст только в pdf
Список литературы
Нокс Р.Б. Биология пыльцы / Р.Б. Нокс – М.: Агропромиздат, 1985. – 83 с.
Сурсо М.В. Лесообразующие хвойные Европейского Севера России (репродуктивная биология, внутривидовая дифференциация, генетический полиморфизм) / М.В. Сурсо – Екатеринбург: УрО РАН, 2007. – 255 с.
Тренин В.В. Цитоэмбриология лиственницы / В.В. Тренин – Л.: Наука, 1986. – 88 с.
Atlagić J. Staining and fluorescent microscopy methods for pollen viability determination in sunflower and other plant species / J. Atlagić, S. Terzić, A. Marjanović-Jeromela. // Ind. Crops Products. – 2012. – Vol. 35. – pp. 88–91. DOI: 10.1016/j.indcrop.2011.06.012
Bayazit S. Comparison of pollen production and quality characteristics of cultivated and wild almond species / S. Bayazit, O. Çalişkan, B. Imrak // Chilean Journal of Agricultural Research. – 2011. – Vol. 71 (4). – pp. 536–541.
Ćalić D. Pollen morphology and variability of Tulipa hungarica Borb. / D. Ćalić, N. Devrnja, J. Milojević et al. // African Journal of Biotechnology. – 2012. – Vol. 11 (3). – pp. 616–620.
Cao Y. Distribution of nuclei and microfilaments during pollen germination in Populus tomentosa Carr. // Y. Cao, R.-Z. Hao, M.-Q.Liu et al. // Afr. J. Agric. Res. – 2012. – Vol. 7 (17). – P. 2679.
da Costa M.L. Growth media induces variation in cell wall associated gene expression in Arabidopsis thaliana pollen tube / M.L. da Costa, L.G. Pereira, S. Coimbra // Plants. – 2013. – Vol. 2. – P. 429. DOI: 10.3390/plants2030429
Dutta S.K. Low temperature storage of mango (Mangifera indica L.) pollen / S.K. Dutta, M. Srivastava, R. Chaudhary et al. // Scientia Horlticulturae. – 2013. Vol. 161. – pp. 193–197.
Helpson-Harrison J. Evaluation of pollen viability by enzymatically induced fluorescence; intracellular hydrolysis of fluorescien diacetate / J. Helpson-Harrison, Y. Helpson-Harrison // Stain Technol. – 1970. – Vol. 45. – pp. 115–120.
Impe D. Assessment of pollen viability for wheat / D. Impe, J. Reitz, C. Köpnick et al. // Front. Plant Sci. – 2020. – Vol. 10. – P. 1588. DOI: 10.3389/fpls.2019.01588
Kundu M. Effect of gamma ray irradiation and cryopreservation on pollen stainability, in vitro germination, and fruit set in Citrus / M. Kundu, A. Dubey, M. Srivastav et al.// Turk J Biol. – 2014. Vol. 38. – pp. 1–9.
Prajapati P.P. Effect of sucrose, boron, calcium, magnesium and nitrate during in vitro pollen germination in Luffa aegyptica Mill. / P.P. Prajapati, B.K. Jain // Journal of Pure and Applied Sciences. – 2010. – Vol. 18. – pp. 5–8.
Noland T. Fluorescein diacetate as a viability stain for tree roots and seeds / T. Noland, G. Mohammed // New Forests. – 1997. – Vol. 14. – pp. 221–232.
Taylor P. Pollen germination and tube growth / P. Taylor, P.K. Hepler // Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol. – 1997. – Vol. 48. – P. 461. DOI: 10.1146/annurev.arplant.48.1.461
Vižintin L. In vitro manipulation of cucumber (Cucumis sativus L.) pollen and microspores: isolation procedures, viability tests, germination, maturation / L. Vižintin, Bohanec B. // Acta Biologica Cracoviensia. Ser. Botanica. – 2004. – Vol. 46. – pp. 177–183.